Будет интересно

Правила забора материала для лабораторных исследований

правила забора материала для лабораторных исследований

Правильность результатов лабораторного исследования обеспечивается тщательным соблюдением требований к технике сбора биологического материала.

Исследование крови

Осуществлять забор крови целесообразно в одно и то же время – утром натощак. При заборе крови из вены время наложения жгута должно быть по возможности минимальным, так как длительный стаз крови повышает содержание общего белка и его фракций, кальция, калия и других компонентов.

В зависимости от цели исследования забор крови для лабораторного анализа осуществляют из пальца (капиллярная кровь) и из вены (венозная кровь).

• Кровь из пальца берёт лаборант; этот анализ необходим для количественного и качественного изучения форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов), определения количества в крови гемоглобина и скорости оседания эритроцитов (СОЭ).

Правила забора материала для лабораторного исследования

Перед сбором материала грудь помыть теплой водой с мылом, вытереть чистым полотенцем, тщательно обработать соски и околососковую область молочных желез ватным тампоном, смоченным 70% этиловым спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном). Первые 10-15 мл сцеженного молока для анализа не используются.

Последующие 3-4 мл молока собираются из каждой груди в отдельные контейнеры (правый и левый подписать). Материал доставляется в лабораторию в течение 2-х часов после сбора.

Посев мокроты.

Мокрота собирается в стерильный контейнер. Перед откашливанием больной должен почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой. Для улучшения откашливания больному предварительно следует назначить отхаркивающие средства, теплое питье.

Правила забора материала для лабораторного исследования при оки

Вниманиеattention
Подготовка к анализу: Спермограмма сдается после не менее 48-часового и не более 7-дневного полового воздержания, материал для исследования собирается путем мастурбации в стерильный контейнер. В этот период нельзя принимать алкоголь, лекарственные препараты, посещать баню или сауну, подвергаться воздействию УВЧ.

При повторном исследовании желательно устанавливать одинаковые периоды воздержания для снижения колебаний полученного результата. Спермограмма — метод исследования эякулята для оценки его оплодотворяющей способности.

При анализе спермы определяют количественные, качественные, морфологические параметры спермы. Даже у одного и того же мужчины в течение года показатели спермы могут значительно изменяться.

При диагностике мужского бесплодия при результатах, отличных от нормы, необходимо через 1-2 недели пересдать спермограмму.

Правила забора биологического материала для лабораторных исследований

Особенности сбора мочи при различных методах исследования:

• Общий анализ мочи: после гигиенической процедуры в чистую ёмкость собирают среднюю порцию мочи (150-200 мл).

• Проба по Нечипоренко: после гигиенической процедуры в чистую ёмкость собирают 5-10 мл из средней порции мочи.

• Проба Амбюрже: больной должен в 5 ч утра помочиться в унитаз, затем тщательно подмыться, а в 8 ч утра помочиться в заранее подготовленную ёмкость (объёмом 0,5 л).

• Проба Каковского-Аддиса: больной должен в 10 ч вечера помочиться в унитаз, ночью постараться в туалет не ходить, а утром в 8 ч после гигиенической процедуры собрать всю мочу в подготовленную ёмкость (объёмом 0,5-1 л).

• Проба Зимницкого: больной должен в 6 ч утра помочиться в унитаз, после этого последовательно собирать мочу в пронумерованные ёмкости, меняя их каждые 3 ч.

Правила забора материала для лабораторных исследований

Во избежание получения ложноположительного результата необходимо убедиться в отсутствии у больного кровоточивости дёсен, носовых кровотечений и кровохарканья; больному запрещается чистить зубы.

Непосредственная подготовка пациента к исследованию:

1. Больному выдают чистый сухой флакон. Следует объяснить, что он должен опорожнить кишечник в судно.


Сразу после дефекации больной должен взять палочкой из нескольких разных участков испражнений 5-10 г кала, поместить собранные фекалии во флакон, который сразу следует закрыть крышкой, и вместе с направлением оставить в санитарной комнате в специально отведённом для этого месте.

2. При анализе кала на скрытую кровь, если дёсны больного кровоточат, необходимо предложить ему за 2-3 дня до исследования не чистить зубы щёткой и рекомендовать полоскать рот 3% раствором питьевой соды.

3.

Охлаждение ликвора ниже 300 ведёт к гибели менингококков.

  • При невозможности немедленно доставить в лабораторию ликвор сохраняют при 370 в термостате.
  • При использовании коммерческих сред (BacT/ALERTFA и др.) свежевзятый ликвор в количестве 5-10 мл из шприца, проколов резиновую пробку, вносится во флакон со средой (см. исследование крови).

Исследование жидкостей организма из стерильных в норме полостей

  • Исследуют перитонеальную, синовиальную, плевральную, суставную, перикардиальную жидкости.
  • Для бактериологического исследования используют жидкости, взятые при пункции и аспирации.
  • Попавшие в шприц пузырьки воздуха удаляют и помещают жидкость в анаэробную транспортную систему или отправляют её в шприце, предварительно сняв (или загнув) иглу или надевают на канюлю защитный стерильный колпачок.

Забор материала для лабораторных исследований

Если посуда, стерилизуемая в лаборатории, не использована в срок, указанный на этикетках её необходимо вернуть в лабораторию для повторной стерилизации.

  • Нативный материал доставляют в лабораторию в максимально короткие сроки (для большинства образцов не позднее 1,5-2 ч после их получения). Допускается хранение материала в холодильнике при 4° С (это не относится к биологическому материалу, полученному из стерильных в норме локусов: ликвору, крови, внутрисуставной и плевральной жидкости!).
  • При использовании транспортных сред биологический материал можно хранить в течение 24 ч.
  • Жидкий биологический материал можно транспортировать непосредственно в шприце, на кончик которого надет стерильный колпачок или загнутая под углом игла.
  • Для исследования на анаэробы биологический материал необходимо помещать в анаэробные условия.

Не подлежат исследованию на анаэробы: отделяемое поверхностных ран и язв, мазки из зева, носа и ротовой полости,мазки из влагалища и цервикального канала, мокрота и бронхиальные смывы, моча (кроме мочи, полученной надлобковой пункцией мочевого пузыря), содержимое желудка, тонкого и толстого ки­шечника, фекалии (за исключением предполагаемой Clostridium difficile-ассоциированной диареи).

Исследование фекалий на патогенные и условно-патогенные энтеробактерии и дисбактериоз.

  • При исследовании на дисбактериоз пациент за 1-3 дня до взятия пробы должен находиться на диете, исключающей приём продуктов, усиливающих процессы брожения в кишечнике, а также алкоголь, антимикробные лекарственные препараты и т. п.
  • Фекалии собирают сразу после дефекации из предварительно обработанного дез.

Забор материала для лабораторных исследований мочи

Материал при инфекциях дыхательных путей

Исследование отделяемого глаз

Исследования биоматериала на инфекции мочевыводящих путей — моча

Инфекции урогенитального тракта (отделяемого женских половых органов)

Инфекции урогенитального тракта (отделяемого мужских половых органов)

Материал при исследовании на анаэробы

Исследование желчи (дуоденального содержимого) при инфекциях желчевыводящих путей

Микробиологическое исследование грудного молока

Правила забора и доставки материала для вирусологических исследований

Исследование крови

  • Для взятия крови используют стерильные шприцы или специальные системы для забора крови одноразового пользования.

Забор и транспортировка материала для лабораторных исследований

  • Минимальный объём жидкости для выделения бактерий 1-5 мл, для выделения грибов или микобактерий не менее 10 мл.
  • Избыток жидкости или гной транспортировать в стерильных контейнерах с завинчивающейся крышкой.
  • Взятие материала тампоном не предохраняет анаэробы от воздействия кислорода воздуха, не позволяет приготовить качественный препарат для микроскопии, не гарантирует выделение культуры при незначительном количестве микробов в образце.
  • Не рекомендуется использовать антикоагулянты (цитрат, этилендиаминтетрауксусную кислоту), подавляющие рост некоторых видов бактерий.
  • При необходимости лучше использовать гепарин.
  • При достаточном количестве жидкости можно производить посев из шприца во флаконы со средой для гемокультур в соотношении 1:5 — 1:10 (5-10 мл).

Правила взятия материала для лабораторных исследований

Э3┬0:3┌Ь╫О)┴2YK{╬.|ъРЩФD~vДт*╖З%▓ЧЯ)YIН├╬Я!аz|)уN╬┬├┼║▌_dy4е▌1╫9+ЇВ╘;╞-╒чїsXо?╞a^ЕГяЄ├д\Бў^8О Ж4keЯ┴Ъ╘зL▓юtМ%C#╩n╞5r&ъ░(Н╚iCвF╠█Х║mn╡╚╢▓эх[-mebРо┘╩╗xй RP+.╗▀╡єO╝wjА,╬оДЄS№с0╝еХа4¤╦ЄУ?▐я┬а╛&ЪУ┌┼ЛЦєМ▒М}D’5╓╕p┐|·╬0}vїb7Ъ\V╞╩KV!▓█$ьж▀~~┌G░:С▄ЦZzщ~╓,└mcО{с»╙┬]Og7^ь╠o╤вч╝^BТДОмя╕u╫A;Ж╒wA\╕°э**Ш’р═п.9аn*p╕╠ЫnцАZв6Uую1 ═ │» !?ваЫДв╤{БєY ╙С▀їлqХBЄт╒У ┬v/╞╦Р(@G!jЁ|:M╠ъЮnЖ}8┴f ч│пИШяюsX┼П▐юn#В╬Є┐и4вї_╦»┘ ╨u╝M╣КLТ▌7┐^»Х╞]▓зп4П1sЗ╘∙иФ╢=_Въ░}s┘-wvnaф █-pм\lЬ~endstream endobj 251 0 obj 3956 endobj 256 0 obj stream xЬ═][o$╫q~чпh╜ї╦VЯK▀№h’/A@Ў»~РЄ`мe’WАдф:@HЬЛСчц,{╔rfgF╥оnЦй:Ч:u║OхА├╚V3ч~ъЎUUў┐╚╩B╚м─ √╧ЮЯ|Їs!▓▀~uЄ┼IЩ╔▓-D#3▌UmV╫eЩ}∙YЎ╦ьsд▓g_┴РпЮ} v8NtЩn█оhUVwв┼ ~∙┘╔o┤гЎЛС¤тg тЬ/N┌Bс ╠╛№є│ч┘OЯтЬ:║(uЎЇ70{D&╗ж╨»ГйльщєУХ!*░Вav╬┐С2Ап]Uх╦▌~{ўн╜J·▓G█Ы┴Rъ№HInfр kФ├гdЮЮ»└∙в╞╢яя┼0М[}¤\Jг░┤С№\╥1VЁйы$hб[U6tfCн▌ Н╛╗2:лс`■°╪╛6(:сПaЎ0[утM~▄aЄЁr╪Ы юЬ/oэiМОїA5Ў4■╥и╤жЕ╓№uР╫amЇГДtdЧР@Цд}аnа╚&4.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *